淀粉含量檢測試劑盒說明書可見分光光度法注意：正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定。貨號：DM-SP10018規格：50T/48S產品內容：試劑一：液體 50mL×1 瓶，4℃保存；試劑二：液體 20mL×1 瓶，4℃保存；試劑三：粉劑×1瓶，4℃保存；標準品：粉劑×10mg支，4℃保存；臨用前加入 1mL 蒸餾水溶解，制備 10mg/mL 葡萄糖標準液。產品說明：淀粉是植物中糖的主要儲存形式，其含量測定對于評價食品營養價值和調查植物體內糖代謝都 有重要意義。利用80％乙醇可以把樣品中可溶性糖與淀粉分開，進一步采用酸水解法分解淀粉為葡萄糖，采 用蒽酮比色法測定葡萄糖含量，即可計算淀粉含量。需自備的儀器和用品：可見分光光度計、水浴鍋、可調式移液器、玻璃比色皿、研缽、冰、濃硫酸（不允許快遞）、 蒸餾水。操作步驟：一、淀粉提取：1 、稱取約 0. 1g 樣品于研缽中研碎，加入 1mL 試劑一，充分勻漿后轉移到 EP 管中，80℃水浴提取 30min ，3000g ，常溫離心 5min ，棄上清，留沉淀。2 、沉淀中加入0.5mL 雙蒸水，放入沸水浴中糊化 15min（蓋緊，以防止水分散失）。3 、冷卻后，加入 0.35mL 試劑二，常溫提取 15min ，振蕩 3-5 次。4 、加入 0.85mL 雙蒸水，混勻，3000g ，常溫離心 10min ，取上清液。5 、取上清液 100μL 加入 700μL 蒸餾水后即進行了八倍稀釋測定。注：若稀釋八倍后樣品吸光度大 于 1.5 或小于 0.1 ，建議將樣品再進行適當稀釋或濃縮后測量。標準溶液準備：將10mg/mL 葡萄糖標準液進行二倍稀釋得到 0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125、0.00625、0.003125、 0.00156mg/mL 標準溶液備用。二、測定操作表：1 、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 620nm ，蒸餾水調零。2 、調節水浴鍋至 95℃。3 、工作液的配制：臨用前在試劑三中加入 13.5mL 蒸餾水后，緩慢加入 76.5mL 濃硫酸，不斷攪拌， 充分溶解，待用。4 、標準品測定：取 0.2mL 標準溶液（蒸餾水做空白）和 1mL 工作液至 EP 管中，95℃水浴 10 min （蓋緊，防止水分散失），自然冷卻至室溫，在 620 nm波長下測定吸光度值 A 標準及A 空白。計算 ΔA=A 標準-A 空白。5 、樣本測定：取0.2mL樣本和1mL工作液至EP管中，95℃水浴10 min（蓋緊，防止水分散失）， 自 然冷卻至室溫，在620 nm 波長下測定吸光度值A測定。ΔA′=A測定- A空白。三、淀粉含量計算：1 、標準曲線繪制：以 0.2 、0.1 、0.05 、0.025 、0.0125 、0.00625 、0.003125 、0.00156mg/mL 葡萄糖標準溶液為橫坐 標，ΔA 為縱坐標繪制標準曲線，得到線性回歸方程 y=kx+b ，將ΔA′代入方程得到 x（mg/mL）； 2、 淀粉含量計算：（1）、按照蛋白濃度計算淀粉含量(mg/mg prot)=x×稀釋倍數×V 提取÷（Cpr×V 提取）=8x÷Cpr2 、按樣本鮮重計算淀粉含量(mg/g 鮮重)=x×稀釋倍數×V 提取÷W= 13.6x÷WV 提取：提取后體積，1.7 mL；Cpr：樣本提取后蛋白質濃度，mg/mL；W：樣品質量，g；稀釋倍數：8。注意事項：由于工作液具有強腐蝕性，請謹慎操作。本產品僅供科學研究使用！請勿用于臨床、診斷、食品、化妝品檢測等用途！
植物蔗糖含量檢測試劑盒說明書可見分光光度法注意：正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。貨號：DM-SP10019規格：50T/48S產品內容:提取液：液體 100ml×1 瓶，4℃保存；試劑一：粉劑10mg×1支 ，4℃保存，臨用前加1mL蒸餾水溶解，用水稀釋10倍，備用，即1mg/mL。試劑二：液體2.5ml×1 瓶，4℃保存；試劑三：液體 40ml×1 瓶，4℃保存； 試劑四：液體 10ml×1 瓶，4℃保存； 試劑五：粉劑0.5g×1 瓶，常溫保存。產品說明:蔗糖是植物光合作用的主要產物，也是糖分運輸和儲藏的主要形式。因此，測定蔗糖含量對于植物糖代謝具有重要意義。此外，蔗糖含量是飲料﹑蜂蜜、果脯﹑糖果和乳制品等產品質量控制的重要指標之一。先用堿與樣品共熱，破壞其中的還原糖。然后在酸性條件下將蔗糖水解生成葡萄糖和果糖，果糖進一步與間苯二酚反應，生成有色物質，在480nm 下有特征吸收峰。自備實驗用品：可見分光光度計、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿和蒸餾水。操作步驟:一、 蔗糖的提取稱取0.1~0.2g 樣本，常溫研碎，加入1mL 提取液，適當研磨后快速轉移到離心管中，置于80℃ 水浴鍋中10min，振蕩3~5 次，冷卻后，4000g，25℃離心10min，取上清，加入2mg試劑五，80℃脫色30min，再加入1mL 提取液，4000g，25℃離心10min，取上清液測定。二、 測定操作混勻，沸水浴 30min，冷卻后 480nm 處蒸餾水調零，空白管、標準管和測定管分別記為 A1、A2 和 A3。三、 蔗糖含量計算：1、 按照蛋白質含量計算蔗糖含量(mg/mg prot)=(C 標準管)×V1×(A3-A1)÷(A2-A1) ÷（V1×Cpr）= (A3-A1)÷(A2-A1) ÷Cpr此法需要自行測定蛋白濃度。2、按照樣品質量計算蔗糖含量(mg/g 鮮重)=(C 標準×V1)×(A3-A1)÷(A2-A1)÷(W×V1÷V2)=2×(A3-A1)÷(A2-A1)÷W。C 標準管：標準管濃度，1mg/mL；V1：加入樣本體積，0.1mL；V2：加入提取液體積，2mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本鮮重，g。注意：當測定 OD480 超過 1.6 時，建議稀釋后測定。
可溶性酸性轉化酶（Soluble acid invertase, S-AI）試劑盒說明書可見分光光度法 貨號：DM-SP10021 規格：50 管/24 樣正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：蔗糖轉化酶（Invertase，Ivr）催化蔗糖不可逆地分解為果糖和葡萄糖，是高等植物蔗糖 代謝關鍵酶之一。根據＊適 pH，Ivr 分為酸性轉化酶（AI）和中性轉化酶（NI）兩種類型。AI 的＊適 pH 為 3～5。AI 分為可溶性 AI(S-AI)和細胞壁不溶性 AI（B-AI）兩種類型。 S-AI 主要存在于細胞液泡或自由空間中，＊適 pH 為 4.5~5.0（酸性），通過降解液泡中蔗 糖，調節液泡中蔗糖的利用和果實內糖類的積累。測定原理：S-AI 催化蔗糖降解產生還原糖，進一步與 3,5－二硝基水楊酸反應，生成棕紅色氨基化合物，在 510nm有特征光吸收，在一定范圍內 510nm 光吸收增加速率與 S-AI 活性成正比。 自備用品：可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。 試劑組成和配制：提取液：液體 50mL×1 瓶，4℃保存;試劑一：液體 50mL×1 瓶，4℃保存;試劑二：粉劑×1 瓶，4℃保存；臨用前加入25mL試劑一充分溶解備用；用不完的試劑 4℃ 保存;試劑三：液體 30mL×1 瓶，4℃保存；粗酶液提取：按照組織質量（ g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL 提取液），進行冰浴勻漿。12000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。測定步驟和加樣表：試劑名稱 (μL）測定管對照管樣本200200試劑一800試劑二800混勻， 37℃準確水浴 30min 后，95℃水浴 10min（蓋緊，以防水分散失），流水冷卻后充分混勻（以保證濃度不變）試劑三500500混勻，95℃水浴 10min（蓋緊，以防止水分散失），流水冷卻后充分混勻，510nm 處，蒸 餾水調零，記錄各管吸光值 A，如果吸光值大于 2，可以用蒸餾水稀釋后測定(計算公式中乘 以相應稀釋倍數)，ΔA=A 測定-A 對照。S-AI 活性計算：標準條件下測定的回歸方程為 y = 0.0016x -0.001；x 為標準品濃度 (μg/mL），y 為吸 光值。（1）按蛋白濃度計算：單位的定義：37℃每mg蛋白每分鐘產生1μg還原糖定義為一個酶活性單位。S-AI 活性 (μg/min/mg prot）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(V1×Cpr ) ÷T =20.8×(ΔA +0.001)÷Cpr（2）按鮮重計算：單位的定義：37℃每g組織每分鐘產生1μg還原糖定義為一個酶活性單位。S-AI 活性 (μg/min/g 鮮重）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(W ×V1÷V2) ÷T=20.8×(ΔA +0.001)÷WV1：加入反應體系中樣本體積，0.2mL；V2：加入提取液體積，1mL；T：反應時間，30min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本鮮重，g。
葡萄糖含量檢測試劑盒說明書 注意：正式測定前務必取2-3 個預期差異較大的樣本做預測定貨號：DM-SP10020規格：50T/48S 產品簡介：可見分光光度法葡萄糖不僅是細胞能量代謝的主要底物，而且其代謝中間產物是生物合成的重要底物。植物可通過光合作用產生葡萄糖。就哺乳動物而言，葡萄糖不僅是大腦神經系統、肌肉、脂肪組織等的唯一能源，而且與還原性輔酶、乳糖和乳脂的合成密切相關。葡萄糖氧化酶催化葡萄糖氧化成葡萄糖酸，并產生過氧化氫；過氧化物酶催化過氧化氫氧化 4-氨基安替比林偶聯酚，生成有色化合物，在 505 nm 有特征吸收峰。試驗中所需的儀器和試劑：可見分光光度計、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽和蒸餾水。產品內容：試劑一：葡萄糖 9mg×1支，4℃保存；臨用前加入1ml蒸餾水充分溶解為50μmol/mL 葡萄糖溶液，用蒸餾水稀釋為 0.5μmol/mL 葡萄糖溶液 -20℃ 保存；試劑二：液體 25mL×1 瓶，4℃保存；試劑三：液體 25mL×1 瓶，4℃保存；混合試劑的配制：使用前將試劑二和試劑三 1:1 等體積混合，用多少配多少。操作步驟：一、葡萄糖提取：1、組織的處理：稱取約 0.1g 樣本，加入 1mL 蒸餾水研磨成勻漿，置沸水浴中煮沸 10 分鐘（蓋緊，防止水分散失），冷卻后，8000g，常溫離心 10min，取上清液備用。2、細菌或細胞處理：收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（104個）：蒸餾水體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 蒸餾水）， 超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3S，間隔 10S，重復 30 次），置沸水浴中煮沸 10 分鐘（蓋緊，防止水分散失），冷卻后，8000g，25℃離心 10min，取上清液備用。二、測定操作表：1、分光光度計預熱 30min。波長調至 505nm，蒸餾水調零。2、在 1.5mL 離心管中依次加入下列試劑：試劑（μL）空白管標準管測定管樣本100試劑一100蒸餾水100混合試劑900900900混勻，置 37℃（哺乳動物）或 25℃（其它物種）水浴中，保溫 15min，于 505nm 波長處讀取吸光度。 葡萄糖含量計算：1、按蛋白濃度計算葡萄糖含量（μmol/mg prot）＝C ×(A 測定管－A 空白管)÷（A 標準管－A 空白管)×V 樣÷（Cpr×V樣）＝0.5×(A 測定管－A 空白管)÷（A 標準管－A 空白管)÷Cpr2、按樣本鮮重計算葡萄糖含量（μmol/g 鮮重）＝C ×(A 測定管－A 空白管)÷（A 標準管－A 空白管) ×V 樣÷（W÷V樣總×V 樣）＝0.5 ×(A 測定管－A 空白管)÷（A 標準管－A 空白管) ÷W3、按細菌或細胞數量計算葡萄糖含量（μmol/104 cell）＝C ×(A 測定管－A 空白管)÷（A 標準管－A 空白管) ×V 樣÷（500÷V樣總×V 樣）＝0.001 ×(A 測定管－A 空白管)÷（A 標準管－A 空白管)C：葡萄糖溶液濃度，0.5μmol/mL；Cpr：樣本蛋白濃度，mg/mL；V 樣：加入的樣本體積，100μL=0.1mL；V 樣總：樣本總體積，1mL；W：樣本鮮重，g；500：細菌或細胞數量，500 萬。4、若 A 測定管大于 1.5，稀釋后進行實驗。
丙二醛(malondialdehyde，MDA)含量試劑盒說明書微量法 貨號：DM-W-A401 規格：100管/96樣正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：氧自由基作用于脂質的不飽和脂肪酸，生成過氧化脂質；后者逐漸分解為一系列復雜的化合物，其中包括MDA。通過檢測MDA的水平即可檢測脂質氧化的水平。測定原理：MDA與硫代巴比妥酸(thiobarbituric acid，TBA)縮合，生成紅色產物，在532nm有＊大吸收峰，進行比色后可估測樣品中過氧化脂質的含量；同時測定600nm下的吸光度，利用532nm與600nm下的吸光度的差值計算 MDA 的含量。需自備的儀器和用品：可見分光光度計/酶標儀、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、微量玻璃比色皿/96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。試劑的組成和配置：提取液：液體 100mL×1 瓶，4℃保存；試劑一：液體 30mL×1 瓶，4℃保存；注意事項：臨用前注意試劑一是否完全溶解，如未溶解，可以70℃加熱，并振蕩以促進溶解。MDA 提取：1、細菌、細胞或組織樣品的制備：細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（104個）：提取液體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。組織：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。2、血清（漿）樣品：直接檢測。測定步驟：1、吸取0.3mL試劑一于1.5mL離心管中，再加入0.1mL樣本, 混勻。2、95℃水浴中保溫30min（蓋緊，防止水分散失），置于冰浴中冷卻，10000g，25℃，離心10min。3、吸取200μL上清液于微量石英比色皿或96孔板中，測定532nm和600nm處的吸光度，記為A532 和A600，ΔA= A532-A600。MDA 含量計算：a. 用微量石英比色皿測定的計算公式如下1、血清（漿）中 MDA 含量的計算：MDA 含量(nmol/ mL)=[ ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷V 樣=25.8×ΔA2、細菌、細胞或動物組織中 MDA 含量計算（1）按照蛋白濃度計算MDA含量(nmol/mg prot)=[ ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(Cpr×V 樣)=25.8×ΔA ÷Cpr需要另外測定，建議使用本公司 BCA 蛋白質含量測定試劑盒。（2）按照樣品質量計算MDA含量(nmol/g 鮮重)=[ ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(W×V樣÷V樣總)=25.8×ΔA ÷W(3 ) 按照細菌或細胞密度計算：MDA含量(nmol/104)=[ ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(500×V 樣÷V 樣總)=0.0516×ΔAV 反總：反應體系總體積， 4×10-4L；ε：丙二醛摩爾消光系數，155×103L/mol/cm；d：比色皿光徑，1cm；V 樣：加入樣本體積，0.1 mL；V 樣總：加入提取液體積，1 mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細胞或細菌總數，500萬。b.用96 孔板測定的計算公式如下1、血清（漿）中 MDA 含量的計算：MDA含量(nmol/mL)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷V 樣=51.6×ΔA2、細菌、細胞或動物組織中 MDA 含量計算（1）按照蛋白濃度計算MDA含量(nmol/mg prot)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(Cpr×V 樣)=51.6×ΔA÷Cpr需要另外測定，建議使用本公司BCA蛋白質含量測定試劑盒。（2）按照樣品質量計算MDA含量(nmol/g 鮮重)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(W×V樣÷V樣總)=51.6×ΔA÷W(3 ) 按照細菌或細胞密度計算：MDA含量(nmol/104)=[ ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(500×V 樣÷V 樣總)=0.1032×ΔAV 反總：反應體系總體積，4×10-4L；ε：丙二醛摩爾消光系數，155×103L/mol/cm；d：96孔板光徑，0.5cm；V 樣：加入樣本體積，0.1 mL；V 樣總：加入提取液體積，1 mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細胞或細菌總數，500 萬。 技術支持電話：400-9681786電子郵件：dm_support@sina.com網址：www.szhwd.com.cn生產廠家：上海篤瑪生物科技有限公司
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